Acétate d'oxytocine — recherche

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Qu'est-ce que Acétate d'oxytocine — recherche

Acétate d'oxytocine — recherche en un coup d'œil

L’acétate d’oxytocine est la forme saline d’un nonapeptide cyclique de synthèse, présentée comme matériau lyophilisé de laboratoire : séquence peptidique, forme saline et données analytiques du lot sont trois niveaux distincts. Les catalogues écrivent également « oxytocine acétate », « acetate d’oxytocine » et, comme terme de classe, « oxytocine peptide » ; aucune variante lexicale ne détermine la forme documentée. Base libre et monoacétate partagent séquence, pont Cys1–Cys6 et extrémité amidée, mais ont chacun leurs propres données de référence. La base libre porte la formule C43H66N12O12S2, une masse molaire moyenne d’environ 1007,2 g/mol, l’InChIKey XNOPRXBHLZRZKH-DSZYJQQASA-N, la PubChem CID 439302 et le CAS 50-56-6. Le monoacétate, forme désignée par le nom acétate d’oxytocine, porte la formule C45H70N12O14S2, une masse molaire moyenne d’environ 1067,2 g/mol, l’InChIKey DSZOEVVLZMNAEH-BXUJZNQYSA-N, la PubChem CID 12004215 et le CAS 6233-83-6. Le monoacétate comprend un équivalent d’acide acétique, soit l’écart d’environ 60,0 g/mol. L’acétate est un contre-ion, et non un résidu supplémentaire ; masse brute du sel et teneur en peptide ne sont pas interchangeables. Ces enregistrements ne se contredisent pas : ils décrivent la même chaîne sous deux formes de substance, se lisent sans être mélangés, et une fiche de base de données ne permet pas d’identifier la forme d’un lot reçu. La forme et le rapport salin d’un lot exigent le document de ce lot et un résultat de spectrométrie de masse approprié. Rapport salin et pureté HPLC relèvent du lot et de la méthode.

Aperçu de la recherche

L’acétate d’oxytocine est la forme saline d’un nonapeptide cyclique de synthèse, présenté comme matériau lyophilisé de laboratoire. Séquence, forme saline et analyse du lot restent distinctes. La chaîne Cys-Tyr-Ile-Gln-Asn-Cys-Pro-Leu-Gly-NH2, soit CYIQNCPLG-NH2, comporte un pont disulfure Cys1–Cys6 et une extrémité C-terminale amidée, le dernier résidu étant une glycinamide. Ces références ne sont ni une mesure chromatographique ni une attribution automatique du lot ; l’analyse d’identité doit porter la même référence d’échantillon que son rapport.

La base libre porte la formule C43H66N12O12S2, une masse molaire moyenne d’environ 1007,2 g/mol, l’InChIKey XNOPRXBHLZRZKH-DSZYJQQASA-N, la PubChem CID 439302 et le CAS 50-56-6. Le monoacétate, forme désignée par le nom acétate d’oxytocine, porte la formule C45H70N12O14S2, une masse molaire moyenne d’environ 1067,2 g/mol, l’InChIKey DSZOEVVLZMNAEH-BXUJZNQYSA-N, la PubChem CID 12004215 et le CAS 6233-83-6. Le monoacétate comprend un équivalent d’acide acétique, correspondant à environ 60,0 g/mol. L’acétate est un contre-ion, et non un résidu supplémentaire ; masse brute du sel et teneur en peptide ne sont pas interchangeables. Les deux enregistrements ne se contredisent pas : ils décrivent la même chaîne sous deux formes de substance. Ils se lisent ensemble sans être mélangés, et une fiche de base de données ne permet pas d’identifier la forme d’un lot reçu. La forme et le rapport salin d’un lot exigent le document de ce lot et un résultat de spectrométrie de masse approprié. « oxytocine acétate », « acetate d’oxytocine » et « oxytocine peptide » sont des graphies de catalogue ou de classe, non des preuves de forme.

Les publications citées couvrent le clonage et la structure du récepteur humain, la pharmacologie du récepteur dans des systèmes cellulaires définis, un modèle préclinique chez le rat, une étude d’imagerie humaine et une cohorte humaine observationnelle. Chaque observation reste limitée au matériau, au modèle, à la méthode et au critère de mesure déclarés et ne caractérise pas le réactif fourni.

La HPLC décrit le profil du lot selon sa méthode, sans confirmer seule séquence, amidation ou forme saline. Étiquette, OT10, code de lot, référence d’échantillon, méthode et certificat doivent concorder. GLOW et KLOW gardent leurs composants et documents propres ; leurs données ne valident pas celles de OT10.

Données techniques
Numéro CAS50-56-6
SummenformelC₄₃H₆₆N₁₂O₁₂S₂
Molekulargewicht1007,2 g/mol
SequenzCys-Tyr-Ile-Gln-Asn-Cys-Pro-Leu-Gly-NH₂ (Disulfid Cys1-Cys6)
Acides aminés9
Pureté≥ 99 % (HPLC)
PubChem CID439302
Structure cibleidentité de l’OXTR humain et architecture à sept domaines transmembranaires dans une étude de clonage d’expression du récepteur humain ; structure de l’OXTR humain en complexe avec un antagoniste non peptidique, cholestérol associé au récepteur et coordination du Mg2+ dans une étude structurale in vitro du récepteur humain ; liaison de ligands et renouvellement des phosphoinositides dans des cellules COS-7 transitoirement transfectées avec une construction d’OXTR endométrial ovin ; propriétés de l’OXTR humain dans des fractions membranaires riches ou pauvres en cholestérol lors d’une étude membranaire in vitro du récepteur humain exprimé dans des cellules HEK293 ; recrutement de sous-types de protéines G lors de comparaisons de ligands peptidiques structurellement modifiés dans une pharmacologie in vitro de l’OXTR humain fondée sur des biocapteurs ; activation de l’amygdale et couplage entre l’amygdale et le tronc cérébral dans une étude d’imagerie humaine aux signaux liés au paradigme ; activité basale et induite expérimentalement de l’axe HPA, y compris des travaux concernant le noyau paraventriculaire, dans un modèle préclinique chez le rat ; associations entre mesures d’oxytocine endogène et réactivité de l’axe HPA liée au cortisol dans une étude de cohorte humaine fondée sur des mesures endogènes ; critères d’identité et d’analyse comprenant la séquence, le pont disulfure Cys1–Cys6 et l’extrémité C-terminale amidée évalués ensemble, les enregistrements séparés de la base libre et du sel d’acétate pour la formule, la masse, le CAS et PubChem, la concordance de l’étiquette, de la spécification, du code de lot et du certificat d’analyse, la pureté HPLC comme valeur propre au lot et à la méthode, et la MS comme preuve d’identité complémentaire
Molekülstruktur
Acétate d'oxytocine — recherche
In vitroModèle animalPilote humain4RCT5Autorisation
Identité moléculaire de l’OXTR
Structure du récepteur
Pharmacologie cellulaire
Littérature biologique qualifiée par le modèle
Documentation du lot

Preuves

Points clés de la recherche

Une étude de clonage d’expression a rapporté une architecture de récepteur couplé aux protéines G à sept domaines transmembranaires pour l’OXTR humain.

Kimura et al. 1992 · PMID 1313946

Une étude cristallographique a résolu la structure de l’OXTR humain en complexe avec un antagoniste non peptidique dans les conditions structurales rapportées.

Waltenspühl et al. 2020 · PMID 32832646

Des études sur cellules transfectées ont examiné la liaison de ligands, le renouvellement des phosphoinositides, les propriétés de domaines membranaires et l’engagement de sous-types de protéines G dans des systèmes OXTR définis.

Riley et al. 1996 · PMID 8691097 · Gimpl et al. 2000 · PMID 10785367 · Busnelli et al. 2012 · PMID 22069312

L’imagerie humaine, un modèle préclinique chez le rat et une cohorte humaine observationnelle portent sur des critères distincts qui ne peuvent être traités comme équivalents ni comme preuves relatives au lot.

Kirsch et al. 2005 · PMID 16339042 · Neumann et al. 2000 · PMID 10718919 · Cox et al. 2015 · PMID 25768266

L’identité, la forme saline, la teneur et les résultats analytiques doivent se rapporter au même lot analysé ; toute indication de pureté ne vaut que pour ce lot et cette méthode.

Documentation de lot Reborn · certificat d’analyse avec HPLC et MS

État de la recherche

Études référencées sur Acétate d'oxytocine — recherche

8 sources sélectionnées — filtrables par type d’étude, chacune renvoie directement à la source.

Research Deep Dive

The research in depth

Model-qualified findings in depth — every claim tied to a PubMed-indexed source.

9 résidusSÉQUENCE PEPTIDIQUE DÉFINIE
2 enregistrements d’identitéBASE LIBRE ET MONOACÉTATE
Cys1–Cys6PONT DISULFURE
8 sourcesCARTE DES PREUVES QUALIFIÉES PAR LE MODÈLE
01Identité du matériau et fiche d’identité

L’acétate d’oxytocine est décrit comme la forme saline d’un nonapeptide cyclique de synthèse. La base libre et le monoacétate partagent la séquence, le pont disulfure Cys1–Cys6 et l’extrémité C-terminale amidée, mais chacun possède son propre ensemble de formule, masse moyenne, InChIKey, PubChem CID et CAS. Ces groupes ne sont jamais interchangeables. La séquence peptidique, la forme saline et les données analytiques du lot sont trois niveaux distincts. Cette page décrit leurs liens sans attribuer à un échantillon une caractéristique qui ne figure pas dans son certificat d’analyse.

CaractéristiqueValeur documentée
Désignationacétate d’oxytocine
Classenonapeptide cyclique, neuf acides aminés, pont disulfure Cys1–Cys6
SéquenceCys-Tyr-Ile-Gln-Asn-Cys-Pro-Leu-Gly-NH2
Code à une lettreCYIQNCPLG-NH2, extrémité C-terminale amidée, glycinamide
Formule brute base libreC43H66N12O12S2
Masse moyenne base libreenviron 1007,2 g/mol
InChIKey base libreXNOPRXBHLZRZKH-DSZYJQQASA-N
PubChem CID base libre439302
CAS base libre50-56-6
Formule brute monoacétateC45H70N12O14S2
Masse moyenne monoacétateenviron 1067,2 g/mol
InChIKey monoacétateDSZOEVVLZMNAEH-BXUJZNQYSA-N
PubChem CID monoacétate12004215
CAS monoacétate6233-83-6
Formelyophilisé en flacon
Code article SKUOT10

Chaque groupe de formule, masse moyenne, InChIKey, CID et CAS doit être lu ensemble. Pour l’acétate d’oxytocine, la sélection du groupe pertinent dépend des pièces reliées au lot. La séquence, le pont Cys1–Cys6 et l’amidation sont des caractères de référence. Ils ne sont ni une mesure chromatographique ni une attribution automatique du lot.

La catégorie des peptides de laboratoire en France situe le matériau dans un cadre documentaire de recherche sans remplacer le contrôle des pièces du lot.

Source relative au récepteur : Kimura et al. 1992 · PMID 1313946

02Base libre et monoacétate : deux formes, deux enregistrements

La base libre et le monoacétate sont deux formes de la même séquence peptidique. Elles partagent le pont disulfure Cys1–Cys6 et l’extrémité C-terminale amidée, mais leur formule, leur masse moyenne, leur InChIKey, leur PubChem CID et leur CAS appartiennent à deux groupes séparés. Comme terme de classe, oxytocine peptide désigne ici un nonapeptide cyclique formé de neuf acides aminés.

Base libre

Le CAS 50-56-6 se lit avec C43H66N12O12S2, environ 1007,2 g/mol, l’InChIKey XNOPRXBHLZRZKH-DSZYJQQASA-N et le CID 439302. Cette fiche de référence ne détermine pas la forme d’un lot reçu.

Monoacétate

Le CAS 6233-83-6 se lit avec C45H70N12O14S2, environ 1067,2 g/mol, l’InChIKey DSZOEVVLZMNAEH-BXUJZNQYSA-N et le CID 12004215. Le monoacétate comprend un équivalent d’acide acétique, soit un écart d’environ 60,0 g/mol entre les masses moyennes de référence.

Graphies de catalogue

oxytocine acétate et acetate d'oxytocine renvoient à la même dénomination, pas à une autre spécification. L’ordre des mots et l’absence d’accentuation ne déterminent pas la forme documentée.

Les deux enregistrements ne se contredisent pas : ils décrivent la même chaîne sous deux formes de substance. Une fiche de base de données ne permet pas d’identifier la forme d’un lot reçu. Le rapport salin, la masse exacte et la pureté HPLC restent des données propres au lot. Les groupes de données ne doivent être mélangés à aucun endroit.

La dénomination, OT10, le code de lot, la référence d’échantillon et le document analytique doivent converger. Une variante lexicale ne remplace jamais cette concordance et ne transforme pas une identité de référence en résultat mesuré.

Source de l’étude : Riley et al. 1996 · PMID 8691097

03Paysage des études

Cette section décrit des résultats issus de recherches contrôlées et ne formule aucune indication d’utilisation. Les références suivent une chronologie couvrant huit cadres de preuve distincts. Le modèle, le matériau, la méthode et le critère mesuré délimitent chaque entrée.

Clonage du récepteur humain
Kimura et al., 1992, Nature

Une étude de clonage d’expression a mesuré l’isolement de l’ADNc de l’OXTR humain et lui a attribué une architecture de récepteur GPCR à sept domaines transmembranaires.

PMID 1313946
Récepteur ovin in vitro
Riley et al., 1996, Journal of Endocrinology

Une étude pharmacologique in vitro du récepteur ovin a mesuré la liaison de ligands et le renouvellement des phosphoinositides pour une construction d’OXTR endométrial ovin dans des cellules COS-7 transitoirement transfectées.

PMID 8691097
Modèle préclinique chez le rat
Neumann et al., 2000, Journal of Neuroendocrinology

Un modèle préclinique chez le rat a mesuré l’activité basale et induite expérimentalement de l’axe HPA chez des rats mâles et femelles, y compris des travaux concernant le noyau paraventriculaire.

PMID 10718919
Membranes du récepteur humain
Gimpl et Fahrenholz, 2000, European Journal of Biochemistry

Une étude membranaire in vitro du récepteur humain a mesuré les propriétés de l’OXTR dans des fractions membranaires riches ou pauvres en cholestérol au moyen d’un récepteur modifié exprimé dans des cellules HEK293.

PMID 10785367
Neuro-imagerie humaine
Kirsch et al., 2005, The Journal of Neuroscience

Une étude de neuro-imagerie humaine a mesuré des variations propres au modèle de l’activation de l’amygdale et du couplage entre l’amygdale et le tronc cérébral.

PMID 16339042
Pharmacologie du récepteur humain
Busnelli et al., 2012, Journal of Biological Chemistry

Une étude pharmacologique in vitro du récepteur humain a utilisé des biocapteurs pour mesurer le recrutement de sous-types de protéines G par l’oxytocine et des ligands peptidiques structurellement modifiés.

PMID 22069312
Cohorte humaine endogène
Cox et al., 2015, Psychoneuroendocrinology

Une étude de cohorte humaine fondée sur des mesures endogènes a évalué les associations entre les mesures d’oxytocine endogène et la réactivité de l’axe HPA liée au cortisol.

PMID 25768266
Structure du récepteur humain
Waltenspühl et al., 2020, Science Advances

Une étude structurale in vitro du récepteur humain a mesuré la structure de l’OXTR humain en complexe avec un antagoniste non peptidique, notamment le cholestérol associé au récepteur et la coordination du Mg2+.

PMID 32832646

Sources des études : les huit notices PubMed liées ci-dessus définissent cette carte des preuves.

04Ce que les données ne démontrent pas

Une étude de clonage d’expression du récepteur humain et une étude structurale in vitro du récepteur humain portent sur l’architecture du récepteur dans leurs systèmes déclarés. La pharmacologie in vitro du récepteur ovin et celle du récepteur humain portent sur des interactions ou des mesures de signalisation propres aux essais. Les signaux d’une étude de neuro-imagerie humaine sont indirects et propres à l’étude. Un modèle préclinique chez le rat reste limité à l’espèce et au plan expérimental. Ces niveaux de preuve ne peuvent être réunis comme s’ils étaient équivalents.

L’étude de cohorte humaine fondée sur des mesures endogènes a évalué l’oxytocine endogène et la réactivité de l’axe HPA liée au cortisol ; elle n’a pas caractérisé un réactif d’acétate d’oxytocine fourni de l’extérieur. Une mesure endogène et une expérience avec un réactif de laboratoire répondent à des questions de recherche différentes. De même, une identité de base de données décrit une entité moléculaire de référence, le matériau d’étude relève d’une publication donnée et le matériau livré exige sa propre chaîne documentaire.

Les articles cités n’établissent ni l’identité, ni la pureté, ni la teneur, ni l’équivalence saline, ni la forme physique du matériau fourni. La concordance entre des observations biologiques ne peut valider un lot commercial. L’attribution bibliographique doit préserver la molécule, le modèle, la méthode et le critère de mesure ; les questions propres au produit exigent l’étiquette applicable, la spécification validée et la documentation du lot.

Les enregistrements PubChem n’attribuent pas un lot à l’une des deux formes. Le matériau présenté est un réactif de laboratoire, hors de tout cadre clinique. Une observation biologique publiée ne confirme ni la séquence complète, ni l’amidation, ni la forme saline d’un échantillon reçu. Seules des pièces reliées au même lot permettent de confronter la dénomination et les résultats analytiques.

Sources délimitant les preuves : Kirsch et al. 2005 · PMID 16339042 · Cox et al. 2015 · PMID 25768266

05Forme, documentation du lot et pureté HPLC

Le dossier catalogue documente lyophilisé en flacon et le code article OT10. Ces deux mentions ne suffisent pas à établir la composition d’un lot. La pureté mesurée par HPLC appartient à l’échantillon désigné, à la méthode consignée et au code de lot indiqué. Une valeur ne peut être étendue à un autre lot, et aucun pourcentage général de pureté n’est attribué ici.

La chromatographie ne confirme pas seule la séquence complète, l’amidation ou la forme saline. Une analyse d’identité complémentaire soutient l’attribution seulement si son périmètre et sa référence d’échantillon figurent dans le même dossier. Le certificat relie la dénomination, OT10, la référence d’échantillon, la méthode, la date, le résultat et la version du rapport.

À réception, le laboratoire enregistre l’étiquette, OT10, le code de lot, la référence de l’échantillon et la version du rapport. Les conditions de conservation suivent les documents du lot et les procédures locales : cette page n’ajoute ni température ni durée. Les principes de lyophilisation expliquent cet état physique et les champs utiles à sa traçabilité, sans confirmer l’identité, la forme saline, la quantité, la pureté ou la stabilité d’un lot.

Avant l’admission interne, un laboratoire situé en France rapproche la dénomination, la forme saline déclarée, la séquence déclarée, la quantité déclarée, le code de lot et le rapport d’analyse. La catégorie situe le matériau dans ce cadre documentaire sans remplacer ce contrôle.

Le blend peptidique GLOW et le blend peptidique KLOW conservent leurs composants et documents propres. Leurs données ne valident pas celles de OT10 et aucun rapprochement de catalogue ne rend leurs dossiers interchangeables.

06Approvisionnement scientifique dans l’UE et cadre de recherche

La classification « research use only » désigne exclusivement un matériau pour la recherche contrôlée en laboratoire. Pour un approvisionnement scientifique dans l’Union européenne, un laboratoire confronte l’identité déclarée, la référence, l’étiquette, la spécification, le code de lot et le rapport analytique avant l’affectation à un projet contrôlé.

Ce matériau n’est destiné ni à la médecine humaine ni à la médecine vétérinaire. Il ne constitue ni un aliment, ni un complément alimentaire, ni un cosmétique. Son identité, sa quantité déclarée et sa pureté restent subordonnées au certificat d’analyse du lot correspondant.

Exclusivement destiné à la recherche en laboratoire. Ne pas utiliser chez l’être humain ni chez l’animal. Ce produit n’est ni un médicament, ni un aliment, ni un complément alimentaire, ni un cosmétique, ni un dispositif médical.

FAQ

Questions fréquentes

Quelle différence existe entre la base libre et le monoacétate ?

Ce sont deux formes de la même séquence, avec pont Cys1–Cys6 et extrémité amidée. Le monoacétate comprend un équivalent d’acide acétique. Chaque forme possède sa formule, sa masse moyenne, son InChIKey, son CID et son CAS. Les deux enregistrements ne se contredisent pas, se lisent ensemble sans être mélangés, et une fiche de base de données ne permet pas d’identifier la forme d’un lot reçu.

Quelle séquence définit le nonapeptide ?

La séquence est Cys-Tyr-Ile-Gln-Asn-Cys-Pro-Leu-Gly-NH2, abrégée CYIQNCPLG-NH2. Le pont Cys1–Cys6 ferme le cycle, l’extrémité C-terminale est amidée et le dernier résidu est une glycinamide. Ces références ne sont ni une mesure chromatographique ni une attribution automatique du lot.

Qu’est-ce que la HPLC confirme à elle seule ?

Elle ne confirme pas seule l’identité. Elle décrit un profil chromatographique du lot selon la méthode consignée, sans établir à elle seule la séquence complète, l’amidation ou la forme saline. Une analyse d’identité complémentaire doit partager le périmètre et la référence d’échantillon du même dossier.

Pourquoi deux numéros CAS sont-ils présentés ?

La base libre porte la formule C43H66N12O12S2, une masse molaire moyenne d’environ 1007,2 g/mol, l’InChIKey XNOPRXBHLZRZKH-DSZYJQQASA-N, la PubChem CID 439302 et le CAS 50-56-6. Le monoacétate porte la formule C45H70N12O14S2, une masse molaire moyenne d’environ 1067,2 g/mol, l’InChIKey DSZOEVVLZMNAEH-BXUJZNQYSA-N, la PubChem CID 12004215 et le CAS 6233-83-6. L’écart d’environ 60,0 g/mol correspond à un équivalent d’acide acétique. L’acétate est un contre-ion, et non un résidu supplémentaire ; masse brute du sel et teneur en peptide ne sont pas interchangeables. Ces groupes complets d’identifiants se lisent ensemble sans être mélangés ; aucun enregistrement ne détermine automatiquement la forme d’un lot reçu. La forme et le rapport salin d’un lot exigent le document de ce lot et un résultat de spectrométrie de masse approprié.

Qu’est-ce que les publications caractérisent dans le lot proposé ?

Rien. Elles décrivent des participants, des espèces, des paradigmes et des critères de mesure délimités. Aucune ne mesure l’identité, la forme saline, le rapport salin ou la valeur HPLC de ce lot.

Qu’est-ce qu’un laboratoire vérifie dans le dossier ?

Il rapproche dénomination, OT10, code de lot, référence d’échantillon, forme et quantité déclarées, méthode, date, résultat et version du rapport. Toute divergence empêche d’attribuer la mesure au matériau.

Qu’est-ce qui est documenté sur la présentation catalogue ?

Seuls « lyophilisé en flacon » et le code article OT10 sont documentés. Ces mentions ne renseignent ni la quantité, ni le format, ni le nombre d’unités d’un conditionnement.

À quelle finalité ce matériau est-il réservé ?

Il est exclusivement réservé à la recherche en laboratoire, « research use only ». Il n’est destiné ni à la médecine humaine ni à la médecine vétérinaire et ne constitue ni un aliment, ni un complément alimentaire, ni un cosmétique, ni un médicament. Le matériau présenté est un réactif de laboratoire.

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